Detecting bacteria of the coliform group in the soft tissue of Mytella guyanensis extracted in Cananéia/SP, Brazil
DOI: 10.15343/0104-7809.202044084091
Keywords:
Thermotolerant coliforms, Estuary, Microbiology Contamination, Mytella guyanensis.Abstract
This study aimed to evaluate the microbiological quality of water and tissue samples of Mytella guyanensis (Mollusk: Bivalve),
a species of relevant commercial interest and is a direct part of the income and food of traditional communities in coastal
regions. This study was carried out in two communities in the Cananeia Estuary known as Retiro and Itanhoapina. During
the period of 2017, where the species is collected for human consumption, water and bivalve samples were collected
in the localities in order to determine the concentrations of total and thermotolerant coliforms. The samples of water and
M. guyanensis were analyzed to determine the Most Probable Number (MPN) of Coliforms, based on the Multiple Tube
Technique. The results of the analyses showed low concentrations of coliforms in the water samples, with a similar result for
the tissue samples of the individuals collected. The water analysis showed a geometric mean of 34.81 total coliforms and
20.70 MPN 100 mL-1 of thermotolerant coliforms. The averages of coliforms in the soft tissues of M. guyanensis were 190
MPN g -1 for total coliforms and 174 MPN g -1 for thermotolerant coliforms. The concentrations of coliforms in the tissue of
the collected specimens showed a positive correlation with temperature and a negative correlation with salinity. There were
significant differences between seasonality in relation to the concentration of total and thermotolerant coliforms in the tissue.
The summer rainy season showed the highest seasonal average of coliforms in M. guyanensis. All values obtained for MPN
of coliforms were below the limit established by the legislation.
Downloads
Download data is not yet available.
References
1. Barbieri E, Bondioli AC, Woiciechovski E, Zapotoski SMK. Microbiology quality of the oysters cultivation water marketed in
Cananeia-SP, Brazil. O Mundo da Saúde 2012; 36(4): 541-547.
2. Mignani L, Barbieri, E, Marques HLA, Oliveira AJFC. Coliform density in oyster culture waters and its relationship with environmental
factors. Pesquisa Agropecuária Brasileira 2013; 48(8): 833-840.
3. Pinto AB, Pereira CR, Oliveira AJFC. Densidade de Enterococcus sp em águas recreacionais e areias de praias do município de São
Vicente – SP, Brasil e sua relação com parâmetros abióticos. Mundo da Saúde 2012; 36(4): 587–593
4. Sande D, Melo TA, Oliveira GSA, Barreto L, Talbolt T, Boehs G, Andrioli JB. Prospecção de moluscos bivalves no estudo da
poluição dos rios Cachoeira e Santana em Ilhéus, Bahia, Brasil. Brazilian Journal Veterinary Research Animal Science 2010; 47(3):
190-196.
5. Nascimento VFS, Araújo MFF. Ocorrência de bactérias patogênicas oportunistas em um Reservatório do Semiárido do Rio Grande
do Norte, Brasil. Revista de Ciências Ambientais. 2013; 7 (1): 91-104.
6. Barros D, Barbieri E. Análise da ocorrência de metais: Ni, Zn, Cu, Pb e Cd em ostras (Crassostrea brasiliana) e sedimentos coletados
no Estuário de Cananéia, SP (Brasil). O Mundo da Saúde 2012; 36(4): 635-642.
7. Nishida AK, Leonel RMV. Occurrence, population dynamics and habitat characterization of Mytella guyanensis (Lamarck, 1819)
(Mollusca, Bivalvia) in the Paraíba do Norte river estuary. Boletim do Instituto Oceangráfico 1995; 43(1): 41-49.
8. Christo SW, Ferreira-Jr AL, Absher TM. Aspectos reprodutivos de mexilhões (Bivalvia, Mollusca) no complexo estuarino de
Paranaguá, Paraná, Brasil. Boletim do Instituto de Pesca 2016; 42(4):924-936.
9. Onodera FK, Henriques MB, Mortalidade de Mytella falcata e M. guyanensis submetidos a diferentes temperaturas. Boletim do
Instituto de Pesca 2017; 43(1): 106-111
10. Doi AS, Oliveira AJFC, Barbieri E. Determinação de coliformes na água e no tecido mole das ostras extraídas em Cananéia, São
Paulo, Brasil. Engenharia Sanitária e Ambiental 2015; 20(1): 111-118
11. Leonel RMV, Silva IN, Salomão LC. Effect of salinity variation on the osmotic concentration and the cation content of thehemolymph of Mytella guyanensis and Mytella charruana (Mollusca, Bivalvia, Mytilidae). Bolm Fisiol. Anim. 1988; 12(1): 89-97
12. FAO 2010. Depuracion de Bivalvos: aspectos fundamentales y práticos. Documento técnico de pesca 511. http://www.fao.
org/3/a-i0201s.pdf
13. Ballesteros ER, Andrade VC, Barbieri E, Pinto AB, Oliveira RS, Oliveira AJFC. Qualidade microbiológica de ostras (Crassostrea
sp) e de águas coletadas em cultivos e em bancos naturais de Cananéia (SP). Boletim do Instituto de Pesca 2016; 42(1): 134-144.
14. Zampieri DBB, Oliveira RS, Pinto AB, Andrade VC, Barbieri E, Chinellato, RM, Oliveira AJFC. Comparison of bacterial densities
and resistance in different beach compartments: should water be our main concern? Mundo da Saúde 2017; 40(A): 461-482.
15. Salles PBD, Macedo YB, Figueiredo EL. Caracterização físico-química e microbiológica da carne do molusco Bivalve Sarnambi
(Phacoides pectinitus) coletado nas praias em Algodoal e Salinópolis, no Pará. Revista brasileira de Tecnologia Agroindustrial 2017;
11(1): 2245-2261.
16. WHO - World Health Organization. Guidelines for drinking-water quality. Switzerland, 4th ed, 2011, p. 541.
17. Balaban N, Rasooly A. Staphylococcal enterotoxins: a review. International Journal Food Microbiology 2000; 21(1): 1-10.
18. ANVISA - Resolução-RDC Nº 12, de 02 de Janeiro de 2001- http://portal.anvisa.gov.br/documents/33880/2568070/
RDC_12_2001.pdf/15ffddf6-3767-4527-bfac-740a0400829b
19. Potasman I, Paz A, Odeh M. Infectious outbreaks associated with bivalve shellfish consumption:a worldwide perspective.
Clinical Infection Diseases 2002; 35(5): 921-928
20. Barbieri, E. Sanidade de moluscos bivalves em relação as biotoxinas marinhas. In: Tavares-Dias, M. & Mariano, W.S. (Org.).
Aquicultura no Brasil. 1ed.São Carlos: Pedro & João Editora, 2015, v. 1, p. 355-379.
21. APHA. American Public Health Association. 2005. Standard Methods for the Examination of Water and Wastewater. 21ª ed.
Washington: American Public Health Association. 1214p.
22. Barbieri E, Collaço FL, Doi AS, Oliveira AJFC, Rezende KFO. Microbiology as an indicator of environmental health of Ilha
Comprida lagoons- SP. Mundo da Saúde 2017; 40(4): 507-520.
23. Zar JH. Biostatistical Analysis, 4a ed. Prentice-Hall Inc., New Jersey, 1999, p.231.
24. Farias MF, Rocha-Barrera CA, Carvalho FCT, Silva CM, Reis EMF, Costa RA, Vieira RHS. Condições microbiológicas de Tagelus
plebeius (Lightfoot, 1786) (Mollusca: Bivalva: Solecurtidae) e da água no estuário do rio Ceará, em Fortaleza - CE. Boletim do
Instituto de Pesca 2010; 36(2): 135-142.
25. Kolm HE, Absher TM. Bacterial density and coliform organisms in waters and oysters of Paranaguá EstuarineComplex, Paraná,
Brazil. Boletim do Instituto de Pesca 2008; 34(1): 49 – 59.
26. Moreira AS, Leao MVP, Santos SSF, Jorge AOC, Silva CRG. Qualidade sanitária da água e de bivalves Iphigenia brasiliensis(Lamarck, 1818) na praia do Jabaquara, Paraty, RJ. Revista Biociências 2011; 17(1): 66-71
27. Mill A, Schlacher T, Kaouli M. Tidal and longitudinal variation of faecal indicator bacteria in an estuarine creek in south-east
Queensland. Marine Pollution Bulletin 2006; 52(8): 881-891.
28. Rodgers CJ. The NSW Shellfish Quality Assurance Program: an operational review. Safe Food Production NSW, Sydney, 2001,
p.146.
29. Codex Alimentarius (CODEX). Standard for live and raw bivalve molluscus. Codex Standard 2008, p.1-7.
30. International Commission on Microbiological Specifications for Foods (ICMSF). Microorganismos in food. Sampling for
microbiological analysis: Principles and specific applications. 2ed., Toronto, Blackwell Scientific Publications, 1986; v. 278.p. 234
31. Kolm HE, Andretta L. Bacterioplancton in different tides of the Perequê tidal creek, Pontal do Sul, Paraná, Brazil. Brazilian Journal
of Microbiology 2003; 34(1): 97-103
32. Ramos RJ, Pereira MA, Miotto LA, Faria LFB, Silveira-Junior N, Vieira CRW. Microrganismos indicadores de qualidade higiênicosanitária
em ostras (Crassostrea gigas) e águas salinas de fazendas marinhas localizadas na Baía Sul da Ilha de Santa Catarina, Brasil.
Revista do Instituto Adolfo Lutz 2010; 69(1): 29-37.
33. Silva AIM, Vieira RHSF, Menezes FGR, Fonteles-Filho AA, Torres RCO, Sant’Anna E. Bacteria of fecal origin in mangrove oysters
(Crassostrea rhizophorae) in the Cocó river estuary, Ceará state, Brazil. Brazilian Journal of Microbiology 2003; 34(1): 126-130.
34. Batista S, Harari J. Modelagem da dispersão de coliformes termotolerantes e enterococos em duas enseadas na região costeira
de Ubatuba (SP), Brasil. Engenharia Sanitária e Ambiental 2017; 22(2): 403-414
35. Doi AS, Barbieri E, Marques HLA. Densidade colimétrica das áreas de extrativismo de ostras em relação aos fatores ambientais
em Cananeia (SP). Engenharia Sanitária e Ambiental 2014; 19(2): 165-171.
36. Ristori CA, Iaria ST, Gelli DS, Rivera ING. Pathogenic bacteria associated with oysters (Crassostrea brasiliana) and estuarine water
along the south coast of Brazil. International Journal of Environmental Health Research 2007; 17(2): 259–269.
37. PNCNB. 2012. Programa Nacional de Controle Higiênico-Sanitário de Moluscos Bivalves. Instrução Normativa Interministerial
MPA/MAPA Nº7 de 08 de maio de 2012. http://www.cidasc.sc.gov.br/inspecao/files/2012/08/20160622154705901.pdf
Cananeia-SP, Brazil. O Mundo da Saúde 2012; 36(4): 541-547.
2. Mignani L, Barbieri, E, Marques HLA, Oliveira AJFC. Coliform density in oyster culture waters and its relationship with environmental
factors. Pesquisa Agropecuária Brasileira 2013; 48(8): 833-840.
3. Pinto AB, Pereira CR, Oliveira AJFC. Densidade de Enterococcus sp em águas recreacionais e areias de praias do município de São
Vicente – SP, Brasil e sua relação com parâmetros abióticos. Mundo da Saúde 2012; 36(4): 587–593
4. Sande D, Melo TA, Oliveira GSA, Barreto L, Talbolt T, Boehs G, Andrioli JB. Prospecção de moluscos bivalves no estudo da
poluição dos rios Cachoeira e Santana em Ilhéus, Bahia, Brasil. Brazilian Journal Veterinary Research Animal Science 2010; 47(3):
190-196.
5. Nascimento VFS, Araújo MFF. Ocorrência de bactérias patogênicas oportunistas em um Reservatório do Semiárido do Rio Grande
do Norte, Brasil. Revista de Ciências Ambientais. 2013; 7 (1): 91-104.
6. Barros D, Barbieri E. Análise da ocorrência de metais: Ni, Zn, Cu, Pb e Cd em ostras (Crassostrea brasiliana) e sedimentos coletados
no Estuário de Cananéia, SP (Brasil). O Mundo da Saúde 2012; 36(4): 635-642.
7. Nishida AK, Leonel RMV. Occurrence, population dynamics and habitat characterization of Mytella guyanensis (Lamarck, 1819)
(Mollusca, Bivalvia) in the Paraíba do Norte river estuary. Boletim do Instituto Oceangráfico 1995; 43(1): 41-49.
8. Christo SW, Ferreira-Jr AL, Absher TM. Aspectos reprodutivos de mexilhões (Bivalvia, Mollusca) no complexo estuarino de
Paranaguá, Paraná, Brasil. Boletim do Instituto de Pesca 2016; 42(4):924-936.
9. Onodera FK, Henriques MB, Mortalidade de Mytella falcata e M. guyanensis submetidos a diferentes temperaturas. Boletim do
Instituto de Pesca 2017; 43(1): 106-111
10. Doi AS, Oliveira AJFC, Barbieri E. Determinação de coliformes na água e no tecido mole das ostras extraídas em Cananéia, São
Paulo, Brasil. Engenharia Sanitária e Ambiental 2015; 20(1): 111-118
11. Leonel RMV, Silva IN, Salomão LC. Effect of salinity variation on the osmotic concentration and the cation content of thehemolymph of Mytella guyanensis and Mytella charruana (Mollusca, Bivalvia, Mytilidae). Bolm Fisiol. Anim. 1988; 12(1): 89-97
12. FAO 2010. Depuracion de Bivalvos: aspectos fundamentales y práticos. Documento técnico de pesca 511. http://www.fao.
org/3/a-i0201s.pdf
13. Ballesteros ER, Andrade VC, Barbieri E, Pinto AB, Oliveira RS, Oliveira AJFC. Qualidade microbiológica de ostras (Crassostrea
sp) e de águas coletadas em cultivos e em bancos naturais de Cananéia (SP). Boletim do Instituto de Pesca 2016; 42(1): 134-144.
14. Zampieri DBB, Oliveira RS, Pinto AB, Andrade VC, Barbieri E, Chinellato, RM, Oliveira AJFC. Comparison of bacterial densities
and resistance in different beach compartments: should water be our main concern? Mundo da Saúde 2017; 40(A): 461-482.
15. Salles PBD, Macedo YB, Figueiredo EL. Caracterização físico-química e microbiológica da carne do molusco Bivalve Sarnambi
(Phacoides pectinitus) coletado nas praias em Algodoal e Salinópolis, no Pará. Revista brasileira de Tecnologia Agroindustrial 2017;
11(1): 2245-2261.
16. WHO - World Health Organization. Guidelines for drinking-water quality. Switzerland, 4th ed, 2011, p. 541.
17. Balaban N, Rasooly A. Staphylococcal enterotoxins: a review. International Journal Food Microbiology 2000; 21(1): 1-10.
18. ANVISA - Resolução-RDC Nº 12, de 02 de Janeiro de 2001- http://portal.anvisa.gov.br/documents/33880/2568070/
RDC_12_2001.pdf/15ffddf6-3767-4527-bfac-740a0400829b
19. Potasman I, Paz A, Odeh M. Infectious outbreaks associated with bivalve shellfish consumption:a worldwide perspective.
Clinical Infection Diseases 2002; 35(5): 921-928
20. Barbieri, E. Sanidade de moluscos bivalves em relação as biotoxinas marinhas. In: Tavares-Dias, M. & Mariano, W.S. (Org.).
Aquicultura no Brasil. 1ed.São Carlos: Pedro & João Editora, 2015, v. 1, p. 355-379.
21. APHA. American Public Health Association. 2005. Standard Methods for the Examination of Water and Wastewater. 21ª ed.
Washington: American Public Health Association. 1214p.
22. Barbieri E, Collaço FL, Doi AS, Oliveira AJFC, Rezende KFO. Microbiology as an indicator of environmental health of Ilha
Comprida lagoons- SP. Mundo da Saúde 2017; 40(4): 507-520.
23. Zar JH. Biostatistical Analysis, 4a ed. Prentice-Hall Inc., New Jersey, 1999, p.231.
24. Farias MF, Rocha-Barrera CA, Carvalho FCT, Silva CM, Reis EMF, Costa RA, Vieira RHS. Condições microbiológicas de Tagelus
plebeius (Lightfoot, 1786) (Mollusca: Bivalva: Solecurtidae) e da água no estuário do rio Ceará, em Fortaleza - CE. Boletim do
Instituto de Pesca 2010; 36(2): 135-142.
25. Kolm HE, Absher TM. Bacterial density and coliform organisms in waters and oysters of Paranaguá EstuarineComplex, Paraná,
Brazil. Boletim do Instituto de Pesca 2008; 34(1): 49 – 59.
26. Moreira AS, Leao MVP, Santos SSF, Jorge AOC, Silva CRG. Qualidade sanitária da água e de bivalves Iphigenia brasiliensis(Lamarck, 1818) na praia do Jabaquara, Paraty, RJ. Revista Biociências 2011; 17(1): 66-71
27. Mill A, Schlacher T, Kaouli M. Tidal and longitudinal variation of faecal indicator bacteria in an estuarine creek in south-east
Queensland. Marine Pollution Bulletin 2006; 52(8): 881-891.
28. Rodgers CJ. The NSW Shellfish Quality Assurance Program: an operational review. Safe Food Production NSW, Sydney, 2001,
p.146.
29. Codex Alimentarius (CODEX). Standard for live and raw bivalve molluscus. Codex Standard 2008, p.1-7.
30. International Commission on Microbiological Specifications for Foods (ICMSF). Microorganismos in food. Sampling for
microbiological analysis: Principles and specific applications. 2ed., Toronto, Blackwell Scientific Publications, 1986; v. 278.p. 234
31. Kolm HE, Andretta L. Bacterioplancton in different tides of the Perequê tidal creek, Pontal do Sul, Paraná, Brazil. Brazilian Journal
of Microbiology 2003; 34(1): 97-103
32. Ramos RJ, Pereira MA, Miotto LA, Faria LFB, Silveira-Junior N, Vieira CRW. Microrganismos indicadores de qualidade higiênicosanitária
em ostras (Crassostrea gigas) e águas salinas de fazendas marinhas localizadas na Baía Sul da Ilha de Santa Catarina, Brasil.
Revista do Instituto Adolfo Lutz 2010; 69(1): 29-37.
33. Silva AIM, Vieira RHSF, Menezes FGR, Fonteles-Filho AA, Torres RCO, Sant’Anna E. Bacteria of fecal origin in mangrove oysters
(Crassostrea rhizophorae) in the Cocó river estuary, Ceará state, Brazil. Brazilian Journal of Microbiology 2003; 34(1): 126-130.
34. Batista S, Harari J. Modelagem da dispersão de coliformes termotolerantes e enterococos em duas enseadas na região costeira
de Ubatuba (SP), Brasil. Engenharia Sanitária e Ambiental 2017; 22(2): 403-414
35. Doi AS, Barbieri E, Marques HLA. Densidade colimétrica das áreas de extrativismo de ostras em relação aos fatores ambientais
em Cananeia (SP). Engenharia Sanitária e Ambiental 2014; 19(2): 165-171.
36. Ristori CA, Iaria ST, Gelli DS, Rivera ING. Pathogenic bacteria associated with oysters (Crassostrea brasiliana) and estuarine water
along the south coast of Brazil. International Journal of Environmental Health Research 2007; 17(2): 259–269.
37. PNCNB. 2012. Programa Nacional de Controle Higiênico-Sanitário de Moluscos Bivalves. Instrução Normativa Interministerial
MPA/MAPA Nº7 de 08 de maio de 2012. http://www.cidasc.sc.gov.br/inspecao/files/2012/08/20160622154705901.pdf
Downloads
Published
2020-01-01
How to Cite
Alessandra Deanna Buono Campos, F., Yoshida Roselli, L., & Barbieri, E. . (2020). Detecting bacteria of the coliform group in the soft tissue of Mytella guyanensis extracted in Cananéia/SP, Brazil: DOI: 10.15343/0104-7809.202044084091. O Mundo Da Saúde, 44, 84–91. Retrieved from https://revistamundodasaude.emnuvens.com.br/mundodasaude/article/view/930
Issue
Section
Articles
